В околоплодных водах мелкодисперсная взвесь: Взвесь в околоплодных водах, причины мелкодисперсной взвеси в околоплодных водах

Содержание

Взвесь в околоплодных водах, причины мелкодисперсной взвеси в околоплодных водах

Причины взвеси в околоплодных водах

Взвесь в околоплодных водах, цвет жидкости, количество — все это очень важные показатели для врача, наблюдающего за беременностью пациентки. Что из себя представляет эта жидкость и какую роль играет во внутриутробном развитии? Об этом в нашей статье.

Околоплодные воды – это жидкость, которая окружает ребенка внутри плодного пузыря. Она имеет очень важные функции. Участвуя в обмене веществ плода, она еще и защищает его от внешних воздействий. Громкие звуки, удары – все это амниотическая жидкость притупляет, тем самым оберегает малыша от травм и создает комфортные условия. К тому же ни одна инфекция не подберется к плоду – внутри пузыря создаются стерильные условия.

В норме околоплодные воды не имеют цвета, прозрачны и имеют чуть сладкий запах. Иногда они окрашиваются в зеленоватый цвет.

Связано это бывает с попаданием в них первородного кала малыша – мекония. При нормальном состоянии плода, выделение его должно произойти только после рождения ребенка. Если же меконий попадает в околоплодную жидкость внутри утробы, то можно говорить о наличии кислородного голодания малыша. Еще меконий может стать причиной развития пневмонии у ребенка.

При обнаружении подобного нарушения обычно назначаются препараты для поддержания кровоснабжения плаценты, либо, на достаточных для рождения сроках, стимулируется родовая деятельность.

Цвет околоплодных вод может быть розоватым, кровянистым. Это очень опасный признак. Если вы обнаруживаете подтекание такой жидкости, то можно предположить отслойку плаценты. В данном случае необходимо экстренное обращение в родильный дом. Там вам проведут ультразвуковое обследование и в зависимости от степени отслойки плаценты (если она есть) либо позволят родить естественным путем, либо экстренно прооперируют.

В целом в течение беременности состав и цвет околоплодных вод претерпевает некоторые изменения. В самом начале они слегка желтоватые, далее становятся прозрачными и светлыми. А к концу периода вынашивания — мутноватыми.

Осадок и мелкодесперсная взвесь в околоплодных водах представляют собой частички первородной смазки, пушковые волоски, которые отделились от кожицы малыша, клеточки его эпителия. Могут там оказаться и продукты жизнедеятельности. Все это причины взвеси в околоплодных водах. То есть данное явление совершенно нормально. И в большей степени характерно для окончания беременности. Потому что к этому периоду плацента выполняет свои функции уже недостаточно полноценно. И обновление вод происходит медленно. В то время как в начале и середине процесса развития беременности они сменяются каждые 3 часа. Амниотическая жидкость со взвесью — это современный врач даже не должен писать в заключении УЗИ. Важно при ультразвуковом обследовании определить количество вод.

Однако случается, что мутность амниотической жидкости является признаком внутриутробной инфекции или следствием инфекционного заболевания самой беременной женщины. Ребенок тогда может появиться на свет уже с конъюктивитом, пневмонией или различными высыпаниями на коже. При подозрении на инфекцию следует сдать анализы на ее идентификацию. И после постановки диагноза пройти лечение антибиотиками.

Для того чтобы оценить насколько мутные околоплодные воды при беременности, то есть поставить точный диагноз, можно использовать разные методики. Одной из самых безопасных является ультразвуковое исследование. Также возможно проведение амниоскопии, когда специальный прибор вводится через шейку матки и оценивает состояние вод, не повреждая пузырь. Это обследование нередко назначают для диагностики кислородной недостаточности у плода вследствие переношенной беременности. Существует еще и метод амниоцентеза – прокола пузыря обычно через брюшную стенку матери. Эта методика также позволяет определить хромосомный набор плода. Амниоцентез обычно назначается во втором триместре беременности при подозрении на генетические заболевания у ребенка.

Взвесь в околоплодных водах — мелкодисперсная и крупнодисперсная

Во время беременности будущая мама сдает множество анализов. Часто они выявляют взвесь в околоплодных водах. Насколько она опасна и как от нее избавиться?

Что такое взвесь?

В течение всего периода вынашивания плода его защищают околоплодные воды (амниотическая жидкость), которые также принимают участие в обмене веществ будущего малыша. В нормальном состоянии они прозрачны, стерильны и обновляются с некоторой периодичностью. В некоторых случаях они имеют желтоватый оттенок.

А когда их цвет становится красным или розоватым, то это может говорить об угрозе выкидыша на ранних сроках (до 20-й недели беременности) или об отслойке плацентарной ткани. В таких случаях беременной женщине потребуется немедленная госпитализация, задачей которой будет сохранение жизни матери и ребенка.

Загрязняют воды продукты жизнедеятельности плода (первородная смазка, лануго, клетки эпителия и пр.). Эти самые примеси и называются взвесью. Различают две разновидности таких «загрязнений»:

  • мелкодисперсные (клетки, лануго, частички смазки), не являющиеся отклонением от нормы;
  • крупнодисперсные (меконий), которые считаются патологическими.

Крупнодисперсные взвеси в околоплодных водах встречаются в 10% случаев вынашивания плода и лишь в 40% из них означают переношенность плода. Врачи до сих пор спорят о причинах возникновения таких примесей. Одни утверждают, что крупнодисперсные взвеси появляются в результате первородного голодания плода, а другие, напротив, считают, что между этой патологией и меконием нет никакой связи.

Мелкодисперсная взвесь в околоплодных водах в большинстве случаев появляется уже перед самими родами и не несет никакого вреда. Поэтому и профилактические меры для ее устранения уже не используются.

Помимо мелкодисперсной (гиперэхогенной) и крупнодисперсной взвеси, в амниотической жидкости может в чрезмерном количестве присутствовать белок. Но этот фактор скорее можно отнести к индивидуальным особенностям организма. Он не несет абсолютно никакой опасности для здоровья матери и ребенка.

Причины появления на разных сроках беременности

При нормальном течение беременности взвесь в околоплодных водах появляется уже после 32-й недели. Таким образом проходит обычная подготовка организма к родам. Об отклонениях свидетельствует лишь присутствие взвеси в околоплодных водах на 20-й неделе и до нее. Такого рода мелкодисперсные примеси могут говорить о наличии инфекции у матери и плода, снижении иммунитета или приеме лекарственных средств беременной.

Воспалительные процессы могут сопровождаться индивидуальными признаками (температура, боль в животе), которые также должны стать для будущей роженицы тревожным знаком.

Другой, не менее опасной причиной возникновения взвесей в околоплодных водах является уреаплазмоз. Уреаплазма не проникает напрямую к плоду, так как его оберегает плацента. Но все равно существует вероятность рождения младенца с заболеваниями глаз, мочевыделительной системы или кожи. Женщинам с данным диагнозом необходимо проходить лечение, уже начиная с 20-й недели.

Когда взвеси в водах выявляются лишь на последних неделях беременности, то это свидетельствует о переношенности плода.

Присутствие в амниотической жидкости мекония говорит о гипоксии плода. Поэтому для подтверждения такого диагноза потребуются дополнительные анализы.

Околоплодная оболочка и плацента постепенно теряют свои способности. На последних неделях беременности появляется взвесь различного характера в околоплодных водах. Такое изменение в амниотической жидкости просто неизбежно, так как она не успевает обновляться. Это никак не влияет на беременность, околоплодные воды содержат взвесь, как правило, мелкодисперсного характера.

Крупнодисперсная взвесь образуется в ходе кислородного голодания плода по причине нарушения кровотока.

Диагностика

Начинать проводить регулярную диагностику околоплодных вод на наличие взвеси можно уже в 17 недель. При нормальном течении беременности раньше в этом нет особой необходимости.

Заметить взвесь в околоплодных водах можно во время планового УЗИ. Это наиболее простой и безопасный тип исследования. При подозрении на данное нарушение врач может назначить дополнительные анализы:

  1. Амниоскопия. В шейку матки матери вводится специальный прибор, анализирующий состояние околоплодных вод. Чаще всего ее проводят для определения гипоксии или переношенности плода.
  2. Амниоцентез. При данном исследовании в брюшную полость матери вводится игла, прокалывается пузырь, и берется образец вод на анализ. Делать такой тест можно лишь во втором триместре беременности. Данное исследование дает точную характеристику взвеси и позволяет выявить возможные патологии развития плода путем расшифровки хромосомного набора.

В результате исследований удается узнать показатели наличия взвеси в околоплодных водах. Если они выходят за рамки принятых норм, то существует немалая вероятность того, что малыш появится на свет с заболеваниями (конъюнктивитом, пневмонией, болезнями мочеполовой системы) или сыпью. Выявление типа взвеси (мелкодисперсная или крупнодисперсная) позволит определить состояние плода и необходимость госпитализации беременной. В некоторых случаях проводятся роды на ранних сроках, что может грозить гибелью плода.

Чтобы избежать таких последствий, беременная должна всегда своевременно проходить обследование и следовать всем рекомендациям врача. А в случае обнаружения взвеси надо не паниковать, а спокойно разобраться в причинах их возникновения и приступать к лечению.

Лечение

Вылечить взвесь в околоплодных водах невозможно, но можно начать работу над устранением причин ее появления. При гипоксии плода врач прописывает беременной препараты, улучшающие кровообращение, разжижающие кровь и способствующие лучшему поступлению кислорода к плоду. При проблемах с иммунной системой могут быть назначены специальные иммуностимуляторы.

А в случаях, когда взвесь представляет реальную угрозу жизни плода или имеет зеленый цвет, проводятся экстренные роды.

На протяжении всего срока беременности гинеколог проводит постоянный осмотр и проверяет состояние здоровья плода. При этом он акцентирует внимание на:

  • сердцебиении;
  • весе плода и изменениях в этих показателях;
  • количестве шевелений за разные отрезки времени.

При обнаружении признаков заболеваний у матери или ребенка врач проводит санацию половых органов и назначает антибактериальное лечение.

В случае обнаружение гиперэхогенной взвеси назначаются профилактические мероприятия в виде таких препаратов, как Хофитол, Актовегин или Вобензим.

Беременной не рекомендуется заниматься самолечением и пытаться избавиться от взвеси в домашних условиях народными средствами. Это может привести к непоправимым, а порой и плачевным последствиям.

Взвеси в околоплодных водах могут как свидетельствовать о различных патологиях, так и быть обычными спутниками беременности. Поэтому очень важно постоянно наблюдаться у гинеколога и сдавать все положенные анализы.

Поделись полезным:

Загрузка…

что это такое? Почему бывают мутные околоплодные воды на 20 неделе? Чем грозит при беременности? Особенности мелкодисперсной и крупнодисперсной, гиперэхогенной и эховзвеси

Часто женщины пугаются, услышав от врача, что в околоплодных водах у них обнаружена эхогенная взвесь. В голову сразу приходят самые страшные сценарии дальнейших событий, но поводы для волнений, поверьте, есть не всегда.

Что это такое?

Взвесь в водах — это не что иное, как свободноплавающие частицы, обычно — продукты жизнедеятельности вашего малыша. Кроха в материнской утробе не скучает — он регулярно заглатывает некоторое количество вод, они проходят по пищеварительному тракту, тренируя его работу и перистальтику кишечника, попадают в мочевой пузырь, малыш умеет писать. Помимо этого, в состав взвеси в норме входят эпителиальные клетки, которые постоянно отшелушиваются, выпавшие волоски лануго, частицы жирной первородной смазки, которая на протяжении почти всей беременности густым слоем покрывает тонкую, как пергамент, кожу, защищая ее от постоянного воздействия водной среды до тех пор, пока кожа не станет плотной.

Воды вырабатываются внутренней мягкой и эластичной оболочкой плодного пузыря — амнионом. И обновление вод происходит каждые 3 часа, чтобы общая среда внутри матки непременно оставалась стерильной.

Наличие частиц продуктов жизнедеятельности малыша, которые мы перечислили, не считают признаком патологии, болезни — это умеренные физиологические взвеси, которые не вызывают опасений.

Однако есть и другие примеси, которые представляют собой более тревожную картину. В мекониальных водах, например, присутствуют частицы первородного кала мекония. В норме кал накапливается в кишечнике ребенка и покидает его только после того, как кроха появится на свет и начнет кушать. Меконий имеет темный зеленый или почти черный цвет. И его появление в водах всегда свидетельствует о состоянии неблагополучия плода, обычно о гипоксии.

Примеси крови в околоплодных водах — тоже крайняя ситуация, в которой нужно принимать срочное решение о спасении плода и его матери, поскольку она может быть признаком отслойки плаценты.

Патологические взвеси наблюдаются только в мутных водах, и почти всегда в этом случае имеет место внутриутробное инфицирование

Как оценивают состояние вод?

Существует несколько способов обнаружения взвеси — УЗИ, амниоскопия и амниоцентез.

Ультразвуковое обследование дает довольно приблизительное представление о составе вод, прозрачности. До конца первого триместра обычно воды анэхогенные, в них нет эховзвесей. Со второго триместра может в норме обнаруживаться эхопозитивная мелкодисперсная взвесь, которая и является, по сути, первыми частицами жизнедеятельности малыша.

На этих сроках взвеси определяются только очень чувствительными сканерами, их количество невелико, а потому говорят об их единичном присутствии в поле зрения. Эхопозитивная гиперэхогенная взвесь может присутствовать в водах с конца второго триместра, чем больше срок беременности, тем ее количество больше. Если обнаруживается слишком много взвеси, то говорят о перенашивании беременности, но такое обычно уже наблюдается после того, как предполагаемый срок родов давно истек, а роды еще не наступили.

Если эховзвесь крупнодисперсная, хлопьевидная, то это чаще всего означает, что в водах присутствуют патологические примеси, например, меконий. Но точно установить это ультразвуковое обследование не позволяет. Оно определяет лишь факт присутствия, а вот детали помогают выяснить другие методы.

При подозрении на гипоксию плода более информативным является метод амниоскопии. Прибор амниоскоп вводят через шейку матки, не травмируя плодные оболочки. Камера на дистальном конце помогает врачу внимательно осмотреть амниотическую жидкость, исследовать ее прозрачность, рассмотреть цвет и характер крупнодисперсной взвеси.

В самых тяжелых сомнительных случаях показана инвазивная диагностика, которой является амниоцентез. Проводится прокол плодного пузыря через переднюю брюшную стенку или задний свод влагалища, тонкой иглой осуществляется забор вод для последующего их изучения в лаборатории. Это самый точный, но и самый рискованный метод диагностики, для которого нужны веские медицинские показания.

Если женщина чувствует себя хорошо, у плода все тоже идет по плану, беременность протекает благополучно, то состояние вод очевидным уже становится в родах, когда плодный пузырь лопается, и воды выходят наружу.

Каким должно быть лечение?

Если врач не встревожен, говоря о наличии небольшого количества мелкодисперсной эхопозитивной взвеси, то нет повода волноваться и женщине, как нет никакого повода что-либо начинать срочно лечить. Процессы внутри матки протекают физиологические, в коррекции и вмешательстве они не нуждаются. Лишь на самых поздних сроках при очевидном перехаживании большое количество таких взвесей косвенно подтверждает перенашивание и может быть поводом для принятия решения о стимуляции родов или проведении кесарева сечения, если к нему имеются индивидуальные показания.

Все меняется, если взвеси патологические. В случае подтверждения мекониальных вод женщине назначается особое лечение и постоянный контроль состояния плода — ультразвук, КТГ. При малейших признаках ухудшения ради спасения малыша проводят досрочное родоразрешение.

Если срок уже большой, и плод доношенный, то предпочтительным считается родоразрешение, чтобы не подвергать малыша даже потенциальному риску.

Для лечения гипоксии рекомендуют препараты, улучшающие маточно-плацентарный кровоток, витамины, кислородные коктейли. При необходимости вводят в схему антибиотики широкого спектра действия, чтобы предупредить инфицирование.

Если лечение эффективно, состояние ребенка улучшается, то естественный механизм обновления вод постепенно приведет к очищению водной среды, и уже через некоторое время воды почти полностью освободятся от смесей.

Профилактика

Предупредить образование мелкодисперсной физиологической эхопозитивной взвеси женщина не может. Да и нет в этом никакой нужды, поскольку она ничем не грозит ни на 18 неделе, ни на 20 неделе, ни на других сроках.

Чтобы не было гипоксии, женщине нужно стараться вести здоровый образ жизни, отказаться от вредных привычек, больше гулять на свежем воздухе, полноценно питаться. Важно постараться исключить все стрессы, переживания, сохранять спокойствие и душевное равновесие.

Ранняя постановка на учет по беременности — отличный шанс обнаружить возможные факторы риска гипоксии или проблем с плацентой на самых начальных стадиях, когда медицинская помощь придется как никогда кстати.

Важно не отказываться от прохождения плановых ультразвуковых исследований, сдачи анализов. Только все это вместе поможет не допустить кислородного голодания плода, при котором последствия могут быть крайне опасными и даже необратимыми.

Взвесь в околоплодных водах

Беременность – один из самых прекрасных периодов в жизни женщины, который открывает новые грани ее личности, окрыляет и наполняет ее душу приятным теплом… Будущая мамочка каждый раз с нетерпением и волнением в груди ждет встречи со своим малышом, и пусть она пока проходит только через экран монитора в кабинете УЗИ. Внимательно вникая в каждое слово из уст доктора о состоянии плода, можно услышать: «Есть взвесь в околоплодных водах!». Что ж, получив такую информацию, не паникуем, а пытаемся разобраться в сложившейся ситуации.

Что за «зверь» – взвесь в водах?

Взвесями называются продукты жизнедеятельности плода (посторонние примеси), находящиеся в околоплодных водах. Это может быть слущенный эпителий, пушковые волосы, элементы сыровидной смазки (гиперэхогенная взвесь), которые относятся к мелкодисперсной взвеси. Такие примеси, в большинстве случаев, возникают на сроке 32-34 недели беременности, встречаются часто, практически не оказывают влияния на развитие плода и свидетельствуют о нормальном течении процесса вынашивания. Наличие же взвеси в конце беременности – признак ее перенашивания.

Взвесь в водах в более ранние сроки наряду с другими индивидуальными признаками может быть связана с наличием инфекции. Так, например, причиной этого может быть и уреаплазмоз. Даже не смотря на то, что уреаплазма неспособна преодолеть плаценту, прохождение новорожденного по родовым путям матери с таким заболеванием может быть чревато заболеванием половых органов у девочки, почек, кожи и глаз ребенка. Поэтому во втором и третьем триместрах обязательно необходимо пройти специальное лечение.

Ослабленный при беременности иммунитет и его неспособность противостоять инфекциям, в том числе вирусным, также с высокой степенью вероятности может приводить к появлению взвесей в околоплодных водах. Прием растительных иммуномоделирующих гомеопатических препаратов, назначенных доктором, будет поддерживать иммунитет, и возможно уже на следующем осмотре примесей в водах не будет.

Иногда в качестве взвеси может выступать повышенная концентрация белка в амниотической жидкости, что является нормальным явлением, так называемой индивидуальной «конституцией».

Что касается мекония – первородного кала, который вследствие внутриутробного отхождения также может относиться к взвесям (встречается в 10% всех родов и до 40% в случаях переношенной беременности), то здесь мнения относительно его влияния на плод разделяются. Одни представители медицины считают, что меконий в околоплодных водах является признаком внутриутробной гипоксии (кислородного голодания) плода, другие же доказывают, что связи между этими явлениями нет, а окрашивание вод меконием – лишь фактор для определения беременных в группу риска по недопущению мекониальной аспирации новорожденного.

Взвесь в околоплодных водах – лечение

Как правило, если ставится диагноз только «взвесь в околоплодных водах», лечение лекарственными препаратами не назначается. Для профилактики гипоксии плода, как фактора риска, рекомендуется принимать «Актовегин», «Хофитол», «Фобензим».

Поскольку взвесь, определенная методом УЗИ на любом сроке беременности, не является маркером ее ненормального течения, то в качестве дообследования и уточнения результата при подозрениях на хромосомные патологии, в случае предположения гипоксии (проверка мекониальной окраски вод) могут быть назначены следующие процедуры:

  • амниоцентез – пункция плодного пузыря;
  • амниоскопия – введение специального эндоскопического прибора в канал шейки матки через влагалище. Эта процедура противопоказана при подозрении на предлежание плаценты, кольпите, цервиците, в случае наличия других инфекционных процессов половых путей и угрозе прерывания беременности. Осложнения после амниоскопии, такие как преждевременное излитие амниотической жидкости, инфицирование, кровотечение маловероятны.

Таким образом, получив диагноз о наличии взвеси в водах при беременности, в первую очередь, нужно понять, что на время, пока будут проводиться дополнительное обследование и консультации опытных докторов по этому вопросу, реальным лекарством для малыша будет только ваше спокойствие.

 

ИЗМЕНЕНИЯ ПЛАЦЕНТЫ И ОКОЛОПЛОДНЫХ ВОД У КУРЯЩИХ БЕРЕМЕННЫХ, ВЫЯВЛЯЕМЫЕ ПРИ УЛЬТРАЗВУКОВОМ СКРИНИНГЕ

ИЗМЕНЕНИЯ ПЛАЦЕНТЫ И ОКОЛОПЛОДНЫХ ВОД У КУРЯЩИХ БЕРЕМЕННЫХ, ВЫЯВЛЯЕМЫЕ ПРИ УЛЬТРАЗВУКОВОМ СКРИНИНГЕ

Луста Н.А.

Днепрорудненская городская больница, ДЦ «Медисон–плюс»

Вступление.  К одной из патологий плаценты относится раннее созревание или т.н. ее раннее старение. Причиной этому может быть ряд состояний: аборты, которые женщина делала ранее, курение, заболевания эндокринной системы, внутриутробные инфекции, гестоз. В норме околоплодные воды на протяжении длительного периода беременности остаются анэхогенными. При использовании ультразвуковых приборов с высокой разрешающей способностью мелкие эхопозитивные частицы могут определяться уже с начала II триместра, но в эти сроки они бывают единичными в поле зрения, а в большом количестве определяются ближе к концу беременности.

Цель. Исследовать частоту случаев выявления ультразвукового признака преждевременного старения плаценты и изменения околоплодных вод у курящих беременных при ультразвуковом исследовании  

Материалы и методы. Проведен анализ изменений плаценты и прозрачности околоплодных вод у 25 курящих беременных в возрасте 17-34 лет со стажем курения от 1,5 до 12 лет. Ультразвуковое исследование проводилось на 20-21 неделе беременности с последующим контролем на 32-33 неделе. Исследование проводилось ультразвуковым сканером «Logiq С3» с применением мультичастотного конвексного датчика с диапазоном частот — 2,0-5,2 МГц. У исследуемых беременных отсутствовали клиника гестоза, заболевания эндокринной системы и лабораторно подтвержденное наличие TORCH-инфекции.

Результаты. При ультразвуковом исследовании в сроке 20-21 недели у 76% у курящих беременных отмечалась 0 степень зрелости плаценты (19 случаев), а у 24% беременных (6 случаев) – І степень зрелости. При ультразвуковом исследовании в сроке 32-33 недели отмечалась тенденция к увеличению % случаев с преждевременным старением плаценты: ІІІ степень зрелости выявлена у 64% беременных, злоупотребляющих курением (16 случаев), у 36% курящих беременных (9 случаев) определялась І-ІІ степени зрелости. Прекращение курения во время беременности (6 случаев) не имело достоверных результатов улучшения состояния плаценты. В дальнейшем, у 48% беременных (12 случаев) отмечалось изменение лабораторных показателей, подтверждающих наличие материнско-плодовой инфекции. Появление мелкодисперсной взвеси в околоплодных водах во ІІ триместре беременности выявлено у 56% курящих беременных (14 случаев).

Выводы. У большинства курящих беременных по данным проведенного исследования отмечалось наличие ультразвуковых признаков преждевременного старения плаценты. У большинства курящих беременных уже во ІІ триместре беременности отмечалось повышение акустической плотности околоплодных вод в виде увеличения в них количества мелких эхопозитивных частиц.

Роль околоплодных вод — УЗ-диагностика

Околоплодные воды — это первый бассейн малыша с эластичными, тонкими, прочными стенками, который обеспечивает эмбриону не только свободное движение, а в первую очередь обмен речевых и защита от негативного воздействия окружающей среды: тихое ощущение звуков, защита от ударов (амортизация), и проникновение инфекции. Благодаря жидкости, формируется стенками плодного яйца и в своем составе содержит микроэлементы: (кальций, натрий), витамины, аминокислоты, жиры, углеводы, наш малыш в 14 недель обеспечивается необходимым количеством питательных вещественных для роста и развития, ведь пуповина и плацента еще недостаточно сформирована. В более поздних сроках водяной мешочек увеличивается (каждую неделю имеет свою норму от 50 до 245 мм) — это дает свободную координацию движений.

Большинство женщин посещая УЗ исследования слышат такую фразу: «У Вас мутные, или мелкодисперсные воды», что же это значит и какого же цвета должны быть околоплодные воды в норме и патологии ?!

В норме амниотическая жидкость прозрачного цвета с блестящим оттенком, без запаха, напоминает нам структуру обычной воды. При сканировании ультразвуком имеет черную окраску.

При патологических изменениях, мы можем наблюдать изменение окраски вод (появление белых мелких точечек, пластов, сгущения жидкости) — это может свидетельствовать о наличии как натуральной смазки плода, так и перенесенные заболевания на ранних сроках беременности, имеющиеся TORH инфекции.

Также, увеличение или уменьшение их количества, в свою очередь тоже будет настораживать нас. Как мало так и багатовиддя является процессом нарушения обмена веществ между плодом и матерью, может привести к внутриутробной задержки развития плода вследствие недостатка кислорода

 

P.S. Вовремя выявленная проблема оставляет больше шансов выносить и родить здорового ребенка!!!

Дата публикации 13.03.2019

Взвесь в водах — Вопрос гинекологу

Если вы не нашли нужной информации среди ответов на этот вопрос, или же ваша проблема немного отличается от представленной, попробуйте задать дополнительный вопрос врачу на этой же странице, если он будет по теме основного вопроса. Вы также можете задать новый вопрос, и через некоторое время наши врачи на него ответят. Это бесплатно. Также можете поискать нужную информацию в похожих вопросах на этой странице или через страницу поиска по сайту. Мы будем очень благодарны, если Вы порекомендуете нас своим друзьям в социальных сетях.

Медпортал 03online.com осуществляет медконсультации в режиме переписки с врачами на сайте. Здесь вы получаете ответы от реальных практикующих специалистов в своей области. В настоящий момент на сайте можно получить консультацию по 71 направлению: специалиста COVID-19, аллерголога, анестезиолога-реаниматолога, венеролога, гастроэнтеролога, гематолога, генетика, гепатолога, гериатра, гинеколога, гинеколога-эндокринолога, гомеопата, дерматолога, детского гастроэнтеролога, детского гинеколога, детского дерматолога, детского инфекциониста, детского кардиолога, детского лора, детского невролога, детского нефролога, детского офтальмолога, детского психолога, детского пульмонолога, детского ревматолога, детского уролога, детского хирурга, детского эндокринолога, дефектолога, диетолога, иммунолога, инфекциониста, кардиолога, клинического психолога, косметолога, логопеда, лора, маммолога, медицинского юриста, нарколога, невропатолога, нейрохирурга, неонатолога, нефролога, нутрициолога, онколога, онкоуролога, ортопеда-травматолога, офтальмолога, паразитолога, педиатра, пластического хирурга, проктолога, психиатра, психолога, пульмонолога, ревматолога, рентгенолога, репродуктолога, сексолога-андролога, стоматолога, трихолога, уролога, фармацевта, физиотерапевта, фитотерапевта, флеболога, фтизиатра, хирурга, эндокринолога.

Мы отвечаем на 97.39% вопросов.

Оставайтесь с нами и будьте здоровы!

Тесты на беременность Амниоцентез — Better Health Channel

Амниоцентез — это дородовая процедура, которую врач может порекомендовать вам во время беременности. Тест проверяет наличие аномалий плода (врожденных дефектов), таких как синдром Дауна, муковисцидоз или расщепление позвоночника. В большинстве случаев результаты нормальные.

Амниоцентез проводится на сроке от 16 до 20 недель беременности. Примерно к этому времени развивающийся ребенок находится в подвешенном состоянии примерно в 130 мл околоплодных вод, которые ребенок постоянно глотает и выделяет.Тонкая игла используется для удаления небольшого количества этой жидкости из мешочка, окружающего плод.

Жидкость исследуется для получения информации о ребенке, включая его пол, и для выявления физических отклонений, таких как синдром Дауна или расщелина позвоночника. Образцы околоплодных вод также могут быть протестированы на ДНК для выявления ряда генетических заболеваний, таких как муковисцидоз и синдром ломкой Х-хромосомы.

Амниоцентез проводится только женщинам с повышенным риском рождения ребенка с врожденным дефектом.Обсудите со своим врачом или акушером, подходит ли вам амниоцентез.

Проблемы, обнаруживаемые при амниоцентезе

Амниоцентез позволяет выявить ряд хромосомных и других врожденных аномалий у развивающегося плода. К ним относятся:

  • Синдром Дауна
  • Дефекты нервной трубки, такие как расщелина позвоночника
  • Генетические нарушения — образцы околоплодных вод можно тестировать на ДНК для выявления ряда генетических заболеваний, таких как кистозный фиброз и синдром ломкой Х-хромосомы.

Женщины, которым может помочь амниоцентез

По мере взросления женщины риск рождения ребенка с синдромом Дауна начинает значительно возрастать — примерно с одной из 2000 (в возрасте 20 лет) до одной из 100 (в возрасте 40 лет). ).

Беременные женщины, которые могут быть кандидатами на амниоцентез:

  • Женщины старше 40 лет (викторианские женщины в возрасте 37 лет и старше обычно проходят этот тест)
  • Женщины с семейным анамнезом хромосомных аномалий, таких как Даун синдром
  • Женщины, у которых уже были дети с хромосомными аномалиями
  • Женщины, которые, как известно, являются носителями генетических нарушений
  • Женщины с партнерами, в семейном анамнезе которых имеется генетическое заболевание или хромосомная аномалия
  • Женщины, которые возвращают аномальный «анализ сыворотки» результат анализа крови или ультразвукового исследования.

Процедура амниоцентеза

Обычно перед проведением амниоцентеза женщину и ее партнера консультируют о рисках, связанных с этой процедурой. Вся процедура занимает около 90 минут.

Этапы амниоцентеза:

  • Женщина ложится, и положение плода и плаценты определяется с помощью ультразвукового исследования.
  • Когда врач уверен в безопасном месте, он протирает живот женщины антисептиком и вводит под кожу местный анестетик.
  • Используя длинную тонкую иглу, врач извлекает от 15 до 20 мл (примерно три чайных ложки) околоплодных вод. Это занимает около 30 секунд.
  • После этого плод проверяется, чтобы убедиться, что все в порядке.

Врач сообщит, когда ожидаются результаты. В некоторых случаях результаты могут занять до трех недель.

Возможно, вам придется подождать в операционной около 20 минут, прежде чем отправиться домой. Большинство женщин считают амниоцентез безболезненным, хотя после этого рекомендуется продолжать отдых в течение часа или около того.

Побочные эффекты процедуры могут включать:

  • Легкий дискомфорт
  • Легкие синяки в месте инъекции.

Осложнения амниоцентеза

Хотя амниоцентез обычно считается безопасной процедурой, возможные осложнения могут включать:

  • Инфекция — симптомы включают лихорадку. Немедленно обратитесь к врачу.
  • Вытекание из влагалища — околоплодные воды могут вытекать из влагалища (примерно в 1% случаев).Обратитесь к врачу для подтверждения. В большинстве случаев утечка замедляется и прекращается в течение двух дней.
  • Самопроизвольный аборт — может произойти менее чем у одного процента женщин, проходящих этот тест. Точные цифры сложно подсчитать, так как некоторые выкидыши все равно случились бы, с амниоцентезом или без него.
  • Сенсибилизация Rh — в редких случаях клетки крови ребенка могут попадать в кровоток матери. Если у матери отрицательный резус-фактор, у нее могут образовываться антитела, которые атакуют эритроциты ребенка.Чтобы предотвратить это, резус-отрицательной матери назначают иммуноглобулин Rh (D) (анти-D). Травма ребенка — очень редко игла, используемая во время процедуры, может случайно коснуться какой-либо части тела ребенка.

Забота о себе дома

Большинство женщин после процедуры чувствуют себя хорошо, и никаких изменений в обычном распорядке дня не требуется. Тем не менее, обычно рекомендуется в ближайшие пару дней расслабиться.

Долгосрочная перспектива после амниоцентеза

Амниоцентез редко причиняет вред матери или ее ребенку в долгосрочной перспективе.Осложнения после амниоцентеза очень редки. Однако, если вы испытываете необычные симптомы, например кровотечение из влагалища, немедленно обратитесь за медицинской помощью.

Куда обратиться за помощью

  • Ваш врач
  • Акушер
  • Гинеколог

Что следует помнить

  • Амниоцентез — это дородовая процедура, проводимая беременной женщине для извлечения небольшого количества околоплодных вод из мешочка, окружающего плод .
  • Целью амниоцентеза является исследование небольшого количества этой жидкости для получения информации о ребенке, включая его пол, и для выявления физических отклонений, таких как синдром Дауна или расщелина позвоночника.
  • Амниоцентез проводится только женщинам с повышенным риском рождения ребенка с врожденным дефектом.

Заживление преждевременных разрывов плодных оболочек

Доклиническая модель стерильной разорванной мембраны на мышах

Мышиная модель стерильного разрыва плодных оболочек была создана с помощью прокола амниотической оболочки иглами 26 или 20 G (внешний диаметр 0,47 или 0,91). мм) на 15-й эмбриональный день (ED). При пункции амниотическая жидкость просочилась через миометрий (рис.1A) и во влагалище через шейку матки (рис. 1B). После удаления миометрия был хорошо виден разорванный край хориодецидуальной оболочки (рис. 1C, D), и была измерена длинная ось разрыва. Край амниона обычно окрашивался черными чернилами (рис. 1С), что отличало его от хориодецидуа. Также измеряли длинную ось разрыва амниона (рис. 1D). В случаях, когда разрыв амниона был неясным, хориодецидуальную ткань осторожно сдвигали ватным тампоном, чтобы прояснить край разорванного амниона. Если амнион зажил полностью, пятно амниона выглядело как точка (рис.1E). Через два часа после разрыва перфорации были видны макроскопически (рис. 2А, 2 часа). Через 24 часа почти половина повреждений все еще была видна, но диаметр перфорации значительно уменьшился. Разрыв закрылся через 48 и 72 ч (рис. 2А). Гистологический анализ места разрыва в поперечном сечении показал, что структура мембраны была прервана через 2 часа после разрыва (рис. 2B, 2 часа). Через 24 часа толщина амниона увеличилась на краю повреждения (рис. 2B, 24 часа). В нашей модели 26 G-индуцированных перфораций амниона были практически закрыты монослоем эпителиальных клеток, покрывающих многослойные мезенхимные клетки в течение 48–72 часов (рис.2Б, 24–72 ч).

Рисунок 1

Мышиная модель стерильной разорванной мембраны с иглой 26 размера (ø 0,47 мм). Утечка околоплодных вод после прокола через плодную оболочку ( A ) во влагалище через шейку матки ( B ). ( C ) Разрыв плодной оболочки через 24 часа после разрыва иглой 20 ga. Миометрий удален для визуализации дефектов мембраны. Обратите внимание, что край разорванного амниона был залит черными чернилами. ( D ) Схема панели C, иллюстрирующая дефекты хориодецидуала и амниона.( E ) Амнион и хориодецидуальная оболочка полностью зажили через 72 часа после разрыва иглой 26 ga.

Рисунок 2

Доклиническая модель стерильных разорванных мембран на мышах. ( A F ) Время заживления амниона. ( A ) Макроскопические изображения разрыва плодных оболочек с помощью иглы 26G. Место разрыва окрашивали индийскими чернилами, образуя черные пятна в центре кругов, обведенных желтым. ( B ) Окрашивание разорванных плодных оболочек гематоксилином-эозином (H&E) иглой 26 G (x 400).Весь гестационный мешок, включая миометрий, оболочки плода и плод, был зафиксирован и разрезан на место повреждения. Am , амнион; Чо , хорион; Dec , decidua; CD , choriodecidua; Myo , миометрий. Красная стрелка указывает на дефект амниона, а черная стрелка указывает на заживший участок. Обратите внимание, что место разрыва было окрашено черными чернилами India Ink. Прутки, 50 мкм. ( C ) Изображения, полученные с помощью сканирующей электронной микроскопии (SEM). После удаления плода и плаценты изображения плодных оболочек были получены изнутри гестационного мешка.Следовательно, показанная здесь поверхность представляет собой эпителиальный слой амниона. Прутки, 20 мкм. ( D E ) Стерильная разорванная мембрана с иглой 20 калибра (ø 0,91 мм). ( D ) Макроскопические изображения разрыва плодных оболочек в указанное время после разрыва 20 G. Желтые пунктирные линии обводят разорванные участки, окрашенные черными чернилами India. Желтые пунктирные линии обводят открытые колотые раны (незажившие), а стрелкой обозначены закрытые участки заживления. ( E ) Окрашивание плодных оболочек H&E после разрыва 20 G в указанное время.Прутки, 50 мкм. ( F ) Иммунофлуоресцентное окрашивание на виментин (зеленый), E-кадгерин (красный) и DAPI (синий) плодных оболочек с интактного участка на эмбриональном d15 (, неповрежденный ) или края заживающего амниона через 24 часа после разрыва 20 G ( Разорванный ). Амнион обведен белыми пунктирными линиями. Прутки, 50 мкм. ( G ) Иммунолокализация HSP70 (красный) и Ki67 (зеленый) в интактных (неразорванных) и заживающих разорванных мембранах через 24 часа после пункции 20 G. Обратите внимание на близость утолщенного амниона к коже плода по сравнению с неповрежденной неповрежденной мембраной.Пруток, 100 мкм.

Сканирующая электронная микроскопия (SEM) использовалась для уточнения ультраструктуры заживляющих плодных оболочек. Изображения были взяты изнутри гестационного мешка, так что изображения отражают внутреннюю поверхность амниона, выстилающего гестационный мешок. Интересно, что коллапсирующие перфорации с хирургически точными краями легко наблюдались через 2 часа после разрыва (рис. 2C, 2 часа). Через 24 часа в месте разрыва была отмечена миграция клеток амниона и отложение матрикса, образуя структуру, похожую на пробку или лоскут (рис.2С, 24 ч). Через 48 и 72 часа место разрыва закрылось утолщением и выпуклостью, предположительно отражая миграцию мезенхимальных клеток и отложение матрикса, как видно с помощью световой микроскопии (рис. 2C, 48 часов и 72 часа). Кроме того, место разрыва, по-видимому, было покрыто эпителиальными клетками амниона (рис. 2C, 48 и 72 часа, изображения с более высоким разрешением показаны на рис. S1A, B).

Затем мы сравнили быстрое полное закрытие проколов 26 G с более крупными разрывами 20 G (внешний диаметр 0,91 мм). В отличие от практически 100% -ного заживления небольших разрывов, почти половина участков разрывов 20 G оставалась открытой даже через 72 часа (рис.2D). Гистологический анализ участков разрыва выявил накопление мезенхимальных клеток амниона (рис. 2E, 48 часов и 72 часа). СЭМ-изображения модели большого разрыва были невозможны из-за прилипания разорванной мембраны к плоду из-за серьезной потери околоплодных вод. Таким образом, после фиксации перепонка оказалась хрупкой и разрушилась при извлечении плода из гестационного мешка. Для изучения динамики заживления участков разрыва 20 G были проведены иммунофлуоресцентные исследования с маркерами эпителия и мезенхимы.В интактных плодных мембранах маркер эпителиальных клеток E-cadherin преимущественно локализуется в межклеточных соединениях эпителиальных клеток амниона и хориона (Fig. 2F). Окрашивание было сильно локализовано и организовано через равные промежутки времени между уплощенными эпителиальными клетками. Виментин-положительные мезенхимные клетки амниона были локализованы в 1-2 клеточных слоях под эпителиальной выстилкой (рис. 2F, интактные), и фибробласты в хорионе также были виментин-положительными (рис. 2F, интактные). В поврежденном эпителии окрашивание E-кадгерином диффузно локализовалось по всей клеточной мембране в течение 24 часов (рис.2F, с разрывом). Виментин-положительные мезенхимальные клетки амниона выступали в месте разрыва, что приводило к утолщению края заживляющего амниона (рис. 2F, разрыв).

Чтобы определить, является ли этот утолщенный край заживляющего амниона следствием пролиферации, иммуноокрашивание Ki67 было колокализовано с HSP70, чтобы гарантировать правильную локализацию места повреждения (рис. 2G). В неповрежденных мембранах HSP70 был пунктированным и редко распределенным. В разорванной мембране через 24 часа HSP70 был более интенсивным и широко распределялся по утолщенному амниону, который находится ближе к коже плода из-за потери околоплодных вод (рис.2F). Интересно, что Ki67 не был увеличен в поврежденном амнионе по сравнению с интактными мембранами и меньше, чем устойчивое окрашивание Ki67, наблюдаемое в пролиферирующей коже плода (Fig. 2G).

Средний диаметр малых разрывов составил 0,12 мм через 24 часа и 0,03 мм через 72 часа, тогда как при больших разрывах диаметр 1,25 мм через 24 часа (значительно увеличился по сравнению с небольшим разрывом через 24 часа) уменьшился до 0,82 мм через 72 часа. ( P <0,01 по сравнению с небольшим разрывом через 72 часа) (рис. 3A). В модели малого разрыва среднее полное закрытие амниона составило 83% через 24 часа и 98% через 72 часа (рис.3Б). Однако в модели большого разрыва частота закрытия составила всего 7% через 24 часа и 48% через 72 часа (рис. 3B). При хориодецидуальной оболочке средний диаметр небольшого разрыва составил 0,31 мм через 24 часа и 0,24 мм через 72 часа (статистически не значимо), тогда как при большом разрыве заживление значительно замедлилось: 1,38 мм через 24 часа ( P <0,01 по сравнению с небольшой разрыв) и 1,29 мм через 72 часа ( P <0,01 по сравнению с небольшим разрывом, рис. S2A). Закрытие хориодецидуальной оболочки было значительно нарушено по сравнению с амнионом на 61% и 78% через 24 и 72 часа соответственно в модели малого разрыва (рис.S2B). В модели большого разрыва хориодецидуальная оболочка не заживала через 24 часа (без закрытия) и только 16% через 72 часа (рис. S2B).

Рисунок 3

Скорость заживления и диаметры перфорации амниона после прокола мембраны. ( A ) Диаметр участков разрыва мембраны в амнионе с помощью иглы 26 G (ø 0,47 мм) или 20 G (ø 0,91 мм) через 24 и 72 часа пункции. Каждый символ представляет один разрыв. Синяя полоса указывает среднее значение и SEM. ** P <0,01, ANOVA. ( B ) Процент полного закрытия разорванного амниона через 24 и 72 часа.Количество полностью закрытых разрывов / полных разрывов показано в виде столбца. * P <0,05, * P <0,01, χ 2 . n = 41–64 пункции из 12–17 плодных оболочек 3–7 беременных мышей в каждой группе. ( C ) Объем околоплодных вод после разрыва с помощью иглы 26 G (ø 0,47 мм) или 20 G (ø 0,91 мм). ЭД, эмбриональный день. Значения сравнивали с объемом неповрежденного гестационного мешка в каждый момент времени. Планки погрешностей представляют SEM. n = 6–20 гестационных мешков от 3–7 беременных мышей в каждой группе.* P <0,05, ** P <0,01.

Во время пункции значительное количество околоплодных вод вытекло из гестационного мешка с увеличенными потерями в модели большого разрыва (рис. 3C). Интересно, что хотя колотые раны закрылись в группе с небольшим разрывом, объем околоплодных вод не восстановился через 48 и 72 часа. Несмотря на значительное уменьшение амниотической жидкости, выживаемость внутриутробного плода не снизилась после небольшого разрыва (> 86%), но несколько снизилась из-за большого разрыва через 72 часа (со 100 до 82%, P <0.05, χ 2 ). Эта увеличенная потеря плода, по-видимому, была пролапсом пуповины через место разрыва. Большинство плодов выглядели здоровыми с нормальным ростом плода, несмотря на олигогидрамнион (масса плода: 1,06 г в интактном состоянии, 1,00 г в диаметре 0,47 мм и 1,01 г в диаметре 0,91 мм, n = 4–6 в каждой группе). Кроме того, маркеры дифференцировки альвеолярного эпителия легких были сходными в легком плода из интактных и разорванных мембран на d18,5 (дополнительная таблица 2).

Уникальные профили экспрессии генов заживления ран в поврежденном амнионе

Классически заживление ран у взрослых состоит из четырех этапов: (1) гемостаз, (2) воспаление, (3) пролиферация и (4) ремоделирование 6,7, 14 .Поврежденные сосуды играют важную роль в этом процессе, начиная с раннего процесса образования сгустка, рекрутирования иммунных клеток и высвобождения факторов роста из неоангиогенеза. Уникальная природа бессосудистого амниона, состоящего из клеток плода, предполагает, что основные механизмы заживления ран должны различаться в плодных оболочках. Чтобы исследовать эти механизмы, профили экспрессии генов, связанные с заживлением ран, были количественно определены в плодных оболочках с повреждением или без него (рис. 4). Используя плодные мембраны in vivo (образцы, которые включают амнион, хорион, децидуальную оболочку и все клетки, прикрепленные к мембране), уровни мРНК провоспалительных цитокинов, интерлейкина-1β ( Il1b ), фактора некроза опухоли ( T ) и Il6 увеличились в течение 2 часов после небольшой пункции, вернувшись к нормальным уровням через 24 часа.Напротив, после большого разрыва относительно высокие уровни мРНК Il1b , Tnf и Il6 сохранялись до 72 часов. Интересно, что противовоспалительный цитокин, Il10 , также заметно повышается в разорванных мембранах, особенно после большого разрыва (60-кратный по сравнению с 8-кратным для Tnf , рис. 4).

Рисунок 4

Разрыв плодных оболочек изменяет экспрессию воспалительных генов in vivo . Экспрессия Il1b , Tnf , Il6 и Il10 в неповрежденном или разорванном виде (ø 0.47 мм: игла 26 G с 8 проколами / мешочек и ø 0,91 мм: игла 20 G с 4 проколами / мешочек плодных оболочек. Относительную экспрессию мРНК каждого гена, нормализованную к экспрессии микроглобулина β 2 , сравнивали с уровнями интактной мембраны через 2 часа. Для статистического анализа экспрессию гена в разорванной мембране сравнивали с экспрессией интактной мембраны в каждый момент времени. Планки погрешностей представляют SEM. n = 5–6 плодных оболочек от 5–6 беременных мышей в каждой группе. * P <0,05, ** P <0.01.

Факторы роста играют важную роль в заживлении ран многих тканей взрослого человека. Однако при заживлении плодных оболочек уровни мРНК этих факторов роста (эпидермальный фактор роста, Egf ; основной фактор роста фибробластов, Bfgf) или Fgf2 ; трансформирующие факторы роста, Tgfb1 и 3; фактор роста эндотелия сосудов, Vegf ; и инсулиноподобные факторы роста, Igf1, и 2) не были индуцированы стерильным разрывом (за исключением небольшого увеличения Tgfb2 после большого разрыва) (рис.S3). Поскольку эти факторы роста в значительной степени участвуют в ангиогенезе, разумно, что они не регулируются в бессосудистом амнионе. Даже TGF-β2 не стимулировал миграцию эпителиальных или мезенхимальных клеток амниона (данные не показаны). В целом, результаты показывают, что амнион не заживает с помощью тех же механизмов, что и другие васкуляризированные ткани.

Коллагеновая матрица ремоделируется на более поздней стадии заживления ран. Следовательно, образование коллагена в месте заживления сравнивали с использованием окрашивания трихромом через 72 часа и количественной ПЦР мРНК коллагена после разрыва 26 или 20 G.После разрыва 26 G волокна коллагена стали тонкими, образуя рыхлую поддерживающую сеть из зажившего амниона (рис. 5A), и уровни мРНК коллагена 1, 3 и 5 типов не были увеличены (рис. 5C). Напротив, отложение коллагена было плотным с большими отложениями в утолщенном месте заживления после разрыва 20 G (рис. 5B). Кроме того, мРНК коллагена 1 и 3 типа увеличивалась через 72 часа (фиг. 5C). МРНК MMP9 также активируется через 24 часа в большом разрыве (фиг. 5C). В совокупности активный синтез коллагена и ремоделирование матрикса происходили в заживляющей мембране после большого разрыва.Отсутствие повышенного Ki67 на участке раны вместе с виментин-положительными клетками внутри утолщенного края предполагает, что заживление раны происходит из-за миграции, EMT и отложения матрикса.

Рисунок 5

Отложение коллагена в плодных оболочках после небольшого или большого разрыва. Окрашивание разорванной плодной оболочки трихромом через 72 часа после пункции иглой 26 G ( A ) или 20 G ( B ). Амнион обозначен зелеными пунктирными линиями. Пруток, 50 мкм. (C) Экспрессия Col1a1, Col3a1, Col5a1, Mmp2 и Mmp9 в неповрежденном или разорванном виде (ø 0.47 мм: игла 26 G с 8 проколами / мешочек и ø 0,91 мм: игла 20 G с 4 проколами / мешочек плодных оболочек. Относительную экспрессию мРНК каждого гена, нормализованную к экспрессии микроглобулина β 2 , сравнивали с уровнями интактной мембраны через 2 часа. Для статистического анализа экспрессию гена в разорванной мембране сравнивали с экспрессией интактной мембраны в каждый момент времени. Планки погрешностей представляют SEM. n = 5–6 плодных оболочек от 5–6 беременных мышей в каждой группе. * P <0,05, ** P <0.01.

Рекрутмент макрофагов околоплодных вод в разорванный амнион

Врожденный иммунитет способствует заживлению ран, и макрофаги играют центральную роль 10 . Чтобы исследовать участие макрофагов в заживлении разорванной оболочки плода, иммуноокрашивание макрофагов было проведено в месте заживления как небольшого (рис. S4B, I), так и большого разорванного амниона через 24 часа после травмы (рис. 6B и S4I). Использовали два маркера макрофагов (F4 / 80 и CD68), что указывало на аналогичные результаты в отношении количества и местоположения макрофагов.В интактном амнионе до разрыва макрофаги практически отсутствовали (рис. 6A, S4A, I). Напротив, макрофаги локализованы в амнионе через 24 часа после повреждения (рис. 6B и S4B) с редкими макрофагами в хорионе и децидуальной оболочке (рис. 6C). В отличие от других тканей, в которых нейтрофилы рекрутируются на ранней стадии заживления ран, нейтрофилы редко встречаются в заживляющем амнионе (рис. S4C, D).

Рисунок 6

Макрофаги и молекулы адгезии в месте разрыва. ( A C ) Иммуноокрашивание на F4 / 80 (зеленый) и DAPI (синий) мембраны через 24 часа после разрыва иглой 20 G.Пунктирными линиями обозначены амнион ( Am , белый), поверхность кожи плода (желтый), хорион ( Cho , голубой) и децидуальная оболочка ( Dec , фиолетовый). Myo , миометрий. ( A ) Неповрежденная плодная оболочка. ( B ) Макрофаги в заживляющем амнионе (стрелки). ( C ) Разрыв края хорио-децидуальной оболочки. Прутки, 50 мкм. ( D F ) Окрашивание разрывов мембран H&E. ( D ) Макрофаг околоплодных вод (стрелка) прикрепляется к разрыву амниона через 2 часа (стрелка).( E и увеличенное изображение в F ) Макрофаги околоплодных вод (зеленые) прикрепляются к поверхности амниона через 24 часа, и мезенхимальные клетки мигрируют (острие стрелки). Обратите внимание на мезенхимальное изменение формы эпителиальных клеток в F . Прутки, 50 мкм. ( G и H ) Флуоресцентная гибридизация in situ (FISH) Y-хромосомы (красный) и иммуноокрашивание на F4 / 80 (зеленый) при заживлении амниона ( G ) и интактного миометрия ( H ) при 48 ч. Прутки, 10 мкм.( I L ) Молекулы адгезии макрофагов в месте разрыва. Иммуноокрашивание на F4 / 80 (зеленый), VCAM1 ( I ) или P-селектин ( J , красный) и DAPI (синий) при разрыве амниона через 24 часа после разрыва иглой 20 G. Прутки, 50 мкм. ( K и L ) Экспрессия гена VCAM1 ( K ) или P-селектина ( L ) интактной или разорванной плодной мембраны с помощью иглы 20G в указанное время. Планки погрешностей представляют SEM.n = 5–6 плодных оболочек от 5–6 беременных мышей в каждой группе. * P <0,05, ** P <0,01.

Затем мы попытались определить происхождение макрофагов, попавших в место повреждения. Макрофаги прикрепляются к разорванному амниону уже через 2 часа (рис. 6D) и прочно прикрепляются к разорванному участку в течение 24 часов (рис. 6E – F и 7C), при этом некоторые из них включаются в амнион (рис. 6B, 7 и S4). . Примечательно, что прикрепление макрофагов было ограничено стороной плода (рис.6D – F). В плодных оболочках, полученных от плода мужского пола, макрофаги, включенные в заживляющий амнион, были положительными по Y-хромосоме с использованием флуоресцентной гибридизации in situ (FISH, рис. 6G), что подтверждает, что эти макрофаги были плодного происхождения. Напротив, макрофаги в миометрии были отрицательными по Y-хромосоме (материнское происхождение, рис. 6H).

Рисунок 7

Локальная секреция цитокинов макрофагами М-2. ( A C ) Иммунофлуоресцентное окрашивание мембраны плода на F4 / 80 (зеленый) или CD68 (зеленый), NO-синтазу-2 (NOS2, красный в A ), аргиназу-1 (Arg1, красный в B ) и DAPI (синий) через 24 часа разрыва иглой 20 G (ø 0.91 мм). Пунктирными линиями обозначены амнион (белый), поверхность кожи плода (желтый), хорион (голубой) и децидуальная оболочка (фиолетовый). Обратите внимание, что Arg1 экспрессировался как в макрофагах ( B и C , стрелка), так и в эпителиальных клетках амниона ( B и C , стрелка). На фиг. 7C — то же место, что и на фиг. 6E и F. Штанги, 50 мкм. ( D I ) Иммунофлуоресцентное окрашивание мембраны плода на F4 / 80 (зеленый), TNF (красный в D F ), IL-1β (красный в G I ) и DAPI (синий) иглой 20 G (ø 0.91 мм). ( E и F ) TNF на участке заживления амниона в макрофагах (стрелка) и эпителиальных клетках амниона (стрелка) через 6 часов после разрыва. ( D ) Интактная плодная оболочка через 6 часов. ( H и I ) IL-1β при заживлении амниона в макрофаге (стрелка) через 24 часа после разрыва. ( G ) Интактная плодная оболочка через 24 часа. Прутки, 50 мкм. ( J ) Количественная оценка CD68-положительных клеток в околоплодных водах каждого гестационного мешка. Синяя полоса указывает среднее значение и SEM.n = 4–9 из 2–5 беременных мышей в каждой группе. ** P <0,01, ANOVA.

Молекулы адгезии (например, молекула внутриклеточной адгезии 1 (ICAM1), молекула адгезии сосудистых клеток 1 (VCAM1), E- и P-селектин) экспрессируются на поверхности воспаленных участков, к которым прикрепляются макрофаги 15 . Хотя иммуноокрашивание VCAM1 и P-селектина отсутствовало в интактном амнионе (рис. S5B, E), оба были локализованы в местах повреждения амниона как в малых (рис. S5A, D), так и в больших (рис.6I, J) места разрыва. Макрофаги прикрепились к амниону, экспрессирующему Р-селектин, в течение 24 часов (фиг. 6J, стрелка). Сходным образом мРНК VCAM1 и P-selectin увеличивались уже через 2 часа после малых и больших разрывов (фиг. 6K – L и S5C, F). В целом данные предполагают, что поврежденные эпителиальные клетки экспрессируют молекулы адгезии в ответ на повреждение, вероятно, прикрепляя рекрутированные амниотические макрофаги для заживления. Подобно паттерну экспрессии цитокинов (рис.4), повышенные уровни мРНК VCAM1 и P-селектина сохранялись после разрыва 20 G (рис.6K, L), предполагая, что рекрутирование макрофагов продолжалось до полного заживления амниона. E-selectin мРНК также увеличивалась в разорванной плодной мембране через 2 часа, но экспрессия гена ICAM1 не регулировалась (данные не показаны).

Затем репрезентативные маркеры макрофагов M1-фенотипа (NO-синтаза-2, NOS2) и макрофагов M2 (аргиназа 1, Arg1) были использованы для характеристики фенотипа макрофагов в поврежденном амнионе 8 . В участке заживления эти макрофаги были NOS2-отрицательными (рис.7A), даже если миометрий положительно окрашен NOS2 (рис. S4G). Напротив, Arg1-положительные M2-макрофаги наблюдались в месте заживления амниона (рис. 7B, C). Таким образом, макрофаги в разорванном амнионе были M2-доминантными, фенотипом заживления ран, хотя фенотип может быть смешанным на ранних этапах, в которых провоспалительные цитокины были локализованы в повреждении. Неожиданно мы также обнаружили сильное окрашивание Arg1 в эпителиальных клетках амниона (рис. 7B, C).

В интактном амнионе TNF и IL-1β не наблюдались (рис.7D, G). В месте разрыва TNF экспрессировался в макрофагах и эпителиальных клетках амниона (фиг. 7E). Точно так же IL-1β экспрессировался в макрофагах (фиг. 7H, I и S7F). IL-1β также экспрессировался в интактной децидуальной оболочке (фиг. 7G). Примечательно, что секреция этих цитокинов была локализована в месте разрыва амниона. Интересно, что количество CD68-положительных макрофагов на объем околоплодных вод значительно увеличивалось из-за разрыва мембран в течение 6 часов (рис. 7J). Через 24–72 часа повышенная плотность макрофагов в околоплодных водах имела тенденцию возвращаться к базальному уровню, что позволяет предположить, что плавающие макрофаги в околоплодных водах прикрепляются и включаются в раненый амнион в течение 24 часов.Вместе высвобождение цитокинов сильно локализовано в месте заживления амниона макрофагами и отзывчивыми эпителиальными клетками.

Эпителиально-мезенхимальный переход (EMT) с помощью IL-1β и TNF

Эпителиально-мезенхимальный переход (EMT) — это биологический процесс, который изменяет фенотип эпителиальных клеток на фенотип мезенхимальных клеток. Поскольку EMT значительно усиливает миграцию клеток и восстановление тканей, мы исследовали возможность того, что EMT может участвовать в заживлении поврежденного амниона.Виментин-положительные или двойные положительные по E-кадгерин-виментину клетки были разбросаны в слое эпителиальных клеток поврежденного амниона в течение 6 часов (рис. 8A и S6F). Эти виментин-положительные клетки также наблюдались через 24 часа (фиг. 8B, C и S6F). Открытие того, что слои эпителия четко отделены от скопления слоя мезенхимальных клеток в месте заживления амниона, предполагает возможность EMT in vivo .

Фигура 8

Эпителиально-мезенхимальный переход (EMT) в мышином pPROM и эпителиальных клетках амниона человека.( A C ) Иммуноокрашивание на виментин (зеленый), E-кадгерин (красный) и DAPI (синий) на месте разрыва амниона иглой 20 G (ø 0,91 мм). Разрыв амниона через 6 часов ( A , 26 G) и 24 часа ( B и C , 20 G ) . ( C ) — увеличенное изображение ( B ). Обратите внимание, что виментин-положительные клетки наблюдались в эпителиальном слое амниона (стрелка). Прутки, 20 мкм. ( D и E ) Анализ царапин на заживление ран первичных эпителиальных клеток амниона человека.Клетки обрабатывали контрольным носителем, IL-1β (1 нг / мл) или TNF (10 нг / мл) после расчесывания. Фазово-контрастные или иммуноокрашенные изображения с виментином (зеленый), E-кадгерином (красный) или DAPI (синий) получали через 0 или 72 часа. Зеленая стрелка указывает на клетки мезенхимальной формы в раненой области эпителиальных клеток. Прутки, 200 мкм. ( E ) Процент закрытия поцарапанных эпителиальных и мезенхимальных клеток амниона человека, обработанных разными дозами IL-1β (верхняя панель) или TNF (нижняя панель). Планки погрешностей представляют стандартное отклонение.n = 3 в каждой группе. * P <0,05, ** P <0,01, по сравнению с контролем (0 нг / мл) в каждый момент времени.

Провоспалительные цитокины могут вызывать ЭМП при заживлении кожи 16 . Таким образом, мы проверили, индуцируют ли IL-1β или TNF ЕМП в первичных эпителиальных клетках амниона человека. В анализах царапин на заживление ран эпителиальных клеток амниона миграция увеличивалась дозозависимо с помощью IL-1β или TNF (фиг. 8D, E). Напротив, IL-1β или TNF не стимулировали миграцию мезенхимальных клеток (рис.8E). Считается, что закрытие царапины стимулируется миграцией, а не пролиферацией эпителиальных клеток, поскольку IL-1β или TNF не изменяют количество жизнеспособных клеток в анализе пролиферации эпителиальных клеток амниона (данные не показаны). Кроме того, IL-6 не стимулировал миграцию эпителиальных или мезенхимальных клеток амниона (данные не показаны). В поцарапанной области IL-1β или TNF изменяли морфологию эпителиальных клеток амниона на веретенообразные клетки (фиг. 8D, зеленые стрелки во втором столбце).Иммунофлуоресценция показала, что эти веретенообразные клетки были виментин-положительными (фиг. 8D, 3-й столбец), что указывает на EMT, и виментин-положительные клетки также были разбросаны в неповрежденной области (фиг. 8D, 3-й столбец). Виментин-положительные клетки не наблюдались в контрольных клетках без повреждений. IL-1β и TNF также изменили морфологию эпителиальных клеток на веретенообразную (рис. 8D, 2-й столбец). Большинство этих клеток сохраняли эпителиальный фенотип (т.е. положительный по E-кадгерину и отрицательный по виментин) (рис.8D, 3-й и 4-й столбцы), несмотря на изменение формы эпителиальных клеток. Продолжение культивирования на 5 дней привело к появлению виментин-положительных клеток в поцарапанной области первичных эпителиальных клеток амниона человека даже без обработки цитокинами (рис. S6C). Экспрессия гена продемонстрировала, что мРНК виментина была значительно увеличена в поцарапанных клетках по сравнению с контрольными клетками без повреждения, тогда как мРНК E-кадгерина не изменилась (фиг. S6D). Более того, культура с 10% FBS в течение 8 дней резко увеличивала ЭМП эпителиальных клеток амниона (рис.S6A, B). Поскольку FBS включает различные цитокины и факторы роста, мы предполагаем, что эпителиальные клетки амниона легко подвергаются ЭМП после стимуляции этими факторами. Скорость миграции эпителиальных клеток ниже, чем у мезенхимальных клеток (Рис. S5E). Таким образом, EMT увеличивает скорость миграции эпителиальных клеток, ускоряя закрытие разорванного амниона. Некоторые из массивных мезенхимальных клеток, агрегирующих в центре заживления in vivo , могут происходить из цитокин-стимулированных эпителиальных клеток амниона посредством ЭМП.

БЕЗОПАСНОЕ испытание. Стерильная эпидуральная инъекция фильтрата амниотической жидкости. — Full Text View

Стеноз поясничного отдела позвоночника — частая причина хронической боли и инвалидности у пожилых людей и основная причина хирургического вмешательства на позвоночнике у пожилых людей. В этом состоянии дегенеративные изменения межпозвонковых дисков и костной анатомии позвоночника приводят к сужению позвоночного канала и нейрофорамену в непосредственной близости от пересекающих корешков спинномозгового нерва, вызывая боль в спине и корешке ног, парестезии и слабость.При отсутствии прогрессирующего неврологического дефицита начальное лечение пояснично-крестцовой корешковой боли включает физиотерапию, изменение активности и пероральные нейропатические или анальгетические препараты. Если этот консервативный подход не помогает облегчить боль, вторым методом лечения является эпидуральная инъекция стероидов (ESI) под визуальным контролем. Хирургическая декомпрессия может быть вариантом лечения для некоторых пациентов, у которых консервативная терапия неэффективна, но она не всегда эффективна и связана со значительными прямыми и косвенными рисками.Кроме того, некоторые пациенты не хотят подвергаться инвазивному хирургическому лечению, а другим операция противопоказана из-за сопутствующих соматических заболеваний.

Эпидуральные инъекции стероидов широко используются для лечения стеноза позвоночника. Более 25% всех эпидуральных инъекций стероидов в популяции Medicare используются для лечения боли, связанной со стенозом позвоночника, что составляет более 500 000 инъекций в год. Эпидуральные инъекции стероидов в позвоночник безопасны при стерильной технике и под рентгеноскопическим контролем.Однако использование стероидов в эпидуральном пространстве связано с редкими, но катастрофическими последствиями, включая параплегию из-за инфаркта спинного мозга. Более крупный размер или агрегация стероидов в виде частиц, вероятно, препятствует артериолярному кровотоку к спинному мозгу при случайном введении в корешковые артерии во время TFESI. Кроме того, эпидуральное применение стероидов связано с общими немедленными / краткосрочными побочными эффектами, такими как покраснение лица, головная боль, бессонница, преходящая гипертензия, повышение уровня глюкозы в крови у пациентов с диабетом.Инъекции необходимо часто повторять при хронической корешковой боли, учитывая типичный естественный анамнез пожизненной боли, связанной с этим состоянием, что увеличивает риск долгосрочных последствий, включая остеопороз, подавление надпочечников, гипертензию, катаракту, желудочно-кишечное кровотечение и иммунитет. системная дисфункция среди многих других.

Кроме того, парадигма инъекционного лечения пациентов со стенозом позвоночника не была оптимизирована. Хотя трансфораминальная эпидуральная инъекция стероидов, по-видимому, превосходит как инъекцию плацебо солевого раствора, так и инъекцию лидокаина при краткосрочном или промежуточном наблюдении, когда выполняется по признакам корешковой боли из-за острой грыжи диска, доказательства самого высокого качества на сегодняшний день предполагают меньшую степень эффективности для индикации боли в ногах из-за стеноза позвоночника. Это особенно проблематично, учитывая, что корешковая боль, связанная с грыжей диска, самостоятельно купируется, тогда как корешковая боль, связанная со стенозом позвоночника, не имеет тенденции к уменьшению со временем.Таким образом, существует большая группа пациентов со стенозом позвоночника, которые не реагируют на физиотерапию и лечение пероральными препаратами, но при этом либо хотят избежать операции на позвоночнике, либо не подходят для лечения и страдают от хронической боли и слабости из-за плохих вариантов лечения. Очевидно, что в этом контексте необходимо изучить более эффективные методы лечения с более оптимальными профилями безопасности и побочных эффектов по сравнению с эпидуральными кортикостероидами.

Поэтому крайне необходимо определить безопасные и эффективные методы лечения этого распространенного клинического состояния, которые позволили бы улучшить функции пациента и облегчить боль.Амниотическая жидкость (AF) — это новый многообещающий биологический препарат с нейрозащитными и регенерирующими свойствами. Рано после зачатия и до тех пор, пока у матери не прекратится вода для рождения ребенка, плод омывают околоплодными водами. AF действует как поддерживающая подушка для плода и обеспечивает защитную среду. AF — богатый источник питательных веществ, цитокинов и факторов роста, необходимых для развития и созревания плода. AF также содержит несколько типов клеток, способных дифференцироваться по нескольким клеточным линиям.Защитные и регенерирующие свойства AF достигаются за счет обмена воды и растворенных веществ с окружающими тканями. Это достигается за счет использования различных путей во время беременности, которые, вероятно, способствуют изменениям в составе ФП с возрастом гестации.

Ранние данные демонстрируют, что концентраты AF ингибируют развитие перитонита и ускоряют защитно-восстановительные механизмы в поврежденных суставах, демонстрируя защитные биологические свойства.После этих ранних публикаций более сложные оценки показали наличие антимикробной, иммуномодулирующей и стимулирующей рост активности AF. Например, низкая антимикробная активность при ФП связана с высокой частотой инфекционных синдромов у беременных. Компоненты с антимикробной, противовирусной и противогрибковой активностью, которые присутствуют при ФП, включают лизоцим, пероксидазу, трансферрин, бета-лизин, иммуноглобулины и комплексы цинк-пептид. Иммуномодулирующие свойства AF очевидны из исследований, показывающих, что энтеральное кормление AF подавляет провоспалительные реакции у недоношенных свиней с некротическим энтероколитом.Кроме того, стимулирующая рост активность AF подтверждается исследованиями как на животных, так и in vitro, показывающими, что AF может усиливать неохондрогенез, регенерировать периферические нервы и кости, ускорять реэпителизацию роговицы и способствовать заживлению ран кожи человека. Некоторые из факторов, обнаруженных при ФП, которые могут способствовать этой активности, включают медиаторы воспаления, такие как TNF-a, IL-6, IL8 и трофические факторы IL-1048, которые включают EGF, IGF-1, FGF, HGF и TGF- a и гиалуроновая кислота, важный фактор, способствующий реэпителизации кожных ран человека.

AF человека также содержит факторы, которые, по-видимому, минимизируют образование рубцов и спаек. Озгенель и др. Описывают, как спаечные процессы и рубцы уменьшаются или устраняются в модели периферического нерва на крысах. Интересно, что разрез плода, сделанный на ранних сроках беременности, заживает без рубца, тогда как разрез, сделанный на поздних сроках, заживает с образованием рубца. Гиалуроновая кислота, высокий уровень которой содержится при ФП, подавляет синтез коллагена. Эта богатая гиалуроновой кислотой среда обусловлена ​​относительным недостатком гиалуронидазы при ФП и наличием фактора, стимулирующего гиалуроновую кислоту при ФП.В исследовании, посвященном изучению влияния AF на протеазы, важные для заживления ран, было показано, что AF человека усиливает активность коллагеназы, но подавляет активность гиалуронидазы, эластазы и катепсина.

Наша команда уже провела исследования для оценки гипотезы о том, что питательные вещества, цитокины и факторы роста, содержащиеся в неклеточной фракции AF, полезны для репаративного и регенеративного лечения пациентов. Первой целью было определение возможности получения согласия и скрининга добровольцев-доноров для рутинного сбора ФП у доношенных беременных женщин, которым запланировано кесарево сечение (кесарево сечение), а затем обработки ФП для клинического применения.Вторая цель заключалась в разработке метода обработки, в результате которого был получен бесклеточный препарат AF, пригодный для клинического применения. Третья цель заключалась в том, чтобы лучше понять компоненты ФП, полученные при доношенной беременности. Первоначально 36 беременных женщин согласились и прошли критерии отбора доноров. AF была успешно собрана у 17 человек. Средний объем AF составлял 70 мл (диапазон 10-815 мл; n = 17). Химический состав жидкостей был сходным, но были отмечены некоторые различия в уровнях HA и профилях цитокинов.Наборы цитокинов показали, что в среднем 304 ± 20 (среднее ± стандартное отклонение; n = 3) из 400 протестированных белков присутствовали при ФП, причем большинство цитокинов связаны с защитой хозяина. Исследованные белки были обозначены в белковых массивах как противовоспалительные или провоспалительные. Двенадцать (12) из ​​17 (70%) белков, обладающих противовоспалительными цитокинами, были обнаружены в образцах AF, в то время как только 5 из 14 (36%) провоспалительных белков были обнаружены в образцах AF. В образцах ФП не было обнаружено (TNF) -α или IL-1β.Были обнаружены три (3) цитокина, обладающих как провоспалительной, так и противовоспалительной активностью. Некоторые из обнаруженных пептидов, классифицированных в соответствии с их функцией, приведены в Таблице 1 ниже:

Таблица 1 Провоспалительный OPN, PAI-I, CD163, RAGE, IL17, IL1R3 Защита хозяина IL-27, LAG-3, GITR, PD1 Врожденный иммунитет hCGb, галектин-3, TLR-2, остеоактивин противомикробный TSP-1, лактоферрин, CXCL14, траппин-2, CCL-28, MIG Противовоспалительный IL1-ra, MBL Эмбриональное развитие DKK1, DKK3 Ангиогенез VEGF R1, перенос, TIMP-2 Заживление ран OPN, PAPP-A, FAP

Влияние материнского покоя и положения покоя на околоплодных водах — полный текст

Чтобы изучить влияние покоя матери в положении лежа на правом или левом боку на индекс околоплодных вод, исследователи разделили пациентов на группы 1 и 2 с помощью компьютеризированной программы и запечатанные карты (первый следователь К.Ю.). Старшая медсестра отделения использовала запечатанные карточки для распределения участников по группам.

Предыдущие исследования выявили повышение индекса околоплодных вод во время покоя матери в положении лежа на левом боку. Таким образом, основным результатом исследования было обнаружение такого же увеличения в левом боковом положении и в правом боковом положении в качестве альтернативы предыдущему положению. Вторичный результат заключался в определении роли отдыха в одиночестве.

Значения изменения индекса околоплодных вод, полученные в предыдущем исследовании, были использованы для анализа мощности.Анализ мощности показал, что для достижения увеличения от начального значения индекса околоплодных вод 153,76 ± 38,47 до значения 185,42 ± 46,89 на 15-й минуте при 90% мощности на одной стороне альфа 0,05, необходимо по крайней мере 34 женщины в каждой. группа. Таким образом, 76 женщин были приглашены к участию в исследовании во избежание непредсказуемых ошибок.

Согласно заранее определенному плану исследования, у всех участников было начальное измерение AFI. После первоначальных измерений AFI женщины в группе 1 (отдых матери в левом боковом положении) отдыхали в левом боковом положении в течение 15 минут, а затем отдыхали в правом боковом положении еще 15 минут.Женщины из группы 2 (отдых матери в правом боковом положении) начинали отдыхать в правом боковом положении в течение 15 минут, а затем отдыхали в левом боковом положении еще 15 минут. Значения AFI в обеих группах были измерены до вмешательства, в конце первых 15 минут и в конце вторых 15 минут. В зависимости от дизайна исследования было непрактично слепить ни наблюдателя, ни участников. Состояние плода и матери оценивали периодически, записывая кривую сердечного ритма плода и измеряя кровяное давление и частоту пульса матери.

Чтобы избежать различий между наблюдателями, один исследователь (второй исследователь, M.Ç.) измерил все AFI с помощью ультразвукового аппарата высокого разрешения (Voluson 730 Pro; General Electric-Kretztechnik, Zipf, Австрия), оснащенного выпуклый датчик (2-7 МГц), когда женщины находились на спине в полулежачем положении. Значения AFI были рассчитаны согласно методике, описанной Phelan et al. Для определения AFI были добавлены измеренные по вертикали значения четырех квадрантов околоплодных вод.То же измерение было повторено немедленно, и среднее значение двух повторяющихся измерений определило AFI. Вариации внутри наблюдателя оценивались с помощью повторяющихся измерений AFI.

Амниоцентез до 1980 г. | Энциклопедия проекта «Эмбрион»

Амниоцентез до 1980 г.

Внеэмбриональные мембраны, которые окружают эмбрионы позвоночных животных, таких как птицы, рептилии и млекопитающие, и происходят из них, имеют решающее значение для их развития. Они являются неотъемлемой частью увеличения площади поверхности матки, формируя хорион (который, в свою очередь, производит плаценту) и амнион соответственно.В конечном итоге амнион окружает эмбрион амниотической полостью, заполненной жидкостью. Эти околоплодные воды, которые смягчают и защищают плод и помогают предотвратить начало родов, отбираются при амниоцентезе для выявления генетических заболеваний.

Амниоцентез использует эмбриональные клетки, которые отшелушиваются во время беременности и становятся взвешенными в окружающей околоплодной жидкости. Во время процедуры небольшой объем околоплодных вод извлекается с помощью длинной иглы, которая вводится через брюшную полость, матку и амниотический мешок, чтобы эти клетки можно было культивировать и анализировать.

Исследователи выполнили трансабдоминальный амниоцентез еще в 1877 году. В первые годы процедуры это было немного больше, чем амниотическая прокладка, и врачи использовали ее в третьем триместре для снижения давления у беременных женщин, страдающих заболеванием, известным как гидрамнион (избыток околоплодных вод). Врачи вставили тонкую иглу в амниотический мешок и извлекли объем околоплодных вод. Игла вводилась в матку наощупь.

В 1930 г. Томас Орвилл Менес, Дж.Дуэйн Миллер и Лиланд Э. Холли был первым, кто выполнил амниоцентез с целью получения амниографии. В амниотический мешок вводили контрастный краситель, чтобы наблюдать очертания плода и плаценты. Как и следовало ожидать, процедура, при которой игла вводилась более или менее вслепую в матку беременной женщины, вызвала серьезные возражения. Эти возражения были связаны с возможностью травмы плода, инфекции, кровотечения из матки и повреждения плаценты.До внедрения амниоцентеза под ультразвуковым контролем в 1972 году место прокола определялось просто путем внешней пальпации живота или позже с помощью ультразвукового исследования B-сканирования в реальном времени, которое позволяло определить местоположение кармана околоплодных вод.

С 1950-х годов процедура также использовалась как инструмент управления эритробластоз плода, состояние, которое возникает, когда резус-отрицательная мать становится изоиммунизированной из-за Несовместимость резус-фактора D, возникающая у плода резус-положительный.Когда женщина с резус-отрицательной кровью и мужчина с резус-положительной кровью зачинают резус-положительный плод, эритроциты плода вызывают выработку материнскими антителами к резус-антигенам. Эти антитела затем проникают через плаценту и могут вызывать лизирование эритроцитов плода, что приводит к состоянию эртиробластоза плода. Это состояние может быть диагностировано с помощью амниотической выборки, поскольку желто-пигментированная жидкость указывает на резус-несовместимость.

В 1949 году было сделано открытие, позволившее применить более широкое применение амниоцентез.Канадский анатом Мюррей Левеллин Барр и его коллеги обнаружили, что присутствие небольших клеточных тел в человеческих клетках, известных сегодня как тела Барра, можно использовать для определения пола в дополнение к половым хромосомам. Это открытие произошло из наблюдения Барра, что когда присутствуют две Х-хромосомы, только одна из них обычно активна. Неактивная Х-хромосома образует наблюдаемую массу хроматина, называемую Тело Барра. Поскольку только женщины имеют две Х-хромосомы, это открытие было полезно по двум причинам.Во-первых, половые хромосомы трудно увидеть под микроскопом. Во-вторых, эта информация может быть использована для выявления пола плодов, матери которых были носителями заболеваний, связанных с полом, что было подтверждено в 1956 г. Фриц Фукс и Povl Riis в 1956 году, который определил, что пол плода можно определить на основании наличия или отсутствия тел Барра в клетках плода, полученных из околоплодных вод. Это открытие было применено для пренатальной диагностики гемофилия в 1960 г. и позже Мышечная дистрофия Дюшенна в 1964 году.

В 1966 г. Марк В. Стил и Уильям Рой Брег успешно культивировал плодные клетки, полученные при амниоцентезе, что позволило кариотипирование хромосом и, следовательно, для будущей диагностики анеуплоидии, такие как трисомия 21 или Синдром Дауна. Эти достижения позволили процедуре амниоцентеза занять доминирующее положение над зарождающейся областью пренатального генетического тестирования и стать стандартной функцией акушерской практики. Публикация Генри Надлера и Альберта Герби « Роль амниоцентеза во внутриматочной диагностике генетических дефектов »в журнале New England Journal of Medicine придала амниоцентезу необходимое доверие.

Среди усовершенствований ранних процедур амниоцентеза было использование ультразвука для ввода иглы в матку. Это улучшение было инициировано Йенс Банг и Аллен Нортевед в 1972 году. Возможно, из-за опасности, присущей этой процедуре, амниоцентез изначально предназначался для женщин пожилого возраста матери (тридцать пять лет и старше), а также для тех, чей развивающийся ребенок может быть подвержен риску определенного врожденного дефекта. Однако в 1983 г. Президентская комиссия по изучению этических проблем в медицине, биомедицине и поведенческой науке предложила пересмотреть показания для амниоцентеза после этического анализа прогностической ценности теста, а также тщательного анализа затрат и выгод, чтобы тест мог быть предлагается женщинам всех возрастов.С появлением открытий о механизмах и диагностике генетических заболеваний амниоцентез стал идеальным дополнением к этим новым знаниям. Он служит частью новаторской области пренатального тестирования, с помощью которого можно определить будущее здоровье плода, еще находящегося в утробе матери. Эта технология вызвала как похвалу, так и споры, и, несомненно, помогла в раннем обнаружении и понимании болезней.

Источники

  1. Американская ассоциация беременных.«Амниоцентез». Американская ассоциация беременности. http://www.americanpregnancy.org/prenataltesting/amniocentesis.html (по состоянию на 19 февраля 2010 г.).
  2. Берман, Мими и Харрис Коэн. Акушерство и гинекология, 2-е изд. Филадельфия, Пенсильвания: Липпинкотт-Рэйвен, 1997, 580.
  3. Коуэн, Рут. Роль женщин в истории амниоцентеза и взятия проб ворсинок хориона. Колумбус, Огайо: Издательство государственного университета Огайо, 1994, 35–48
  4. «Эритробластоз плода». Медицинская онлайн-библиотека руководств Merck.http://www.merck.com/mmpe/sec18/ch363/ch363f.html (по состоянию на 22 апреля 2010 г.).
  5. Фергюсон-Смит, М.А. «Амниоцентез». В Энциклопедии генетики, ред. Сидней Бреннер и Джеффри Миллер, 1: 60–1. Сан-Диего, Калифорния: Academic Press, 2001.
  6. Гертнер, Мелвин, Лилиан Хсу, Джоан Мартин и Курт Хиршхорн. «Использование амниоцентеза для пренатального генетического консультирования». Бюллетень Нью-Йоркской медицинской академии (1970): 916–21.
  7. Liley, A. W. «Использование амниоцентеза и переливания крови плода при эритробластозе плода.Педиатрия 35 (1965): 836–47.

Келли, Кристин, «Амниоцентез до 1980 года».

(02.09.2010). ISSN: 1940-5030 http://embryo.asu.edu/handle/10776/2072.

Государственный университет Аризоны. Школа наук о жизни. Центр биологии и общества. Энциклопедия проекта эмбриона.

© Правление Аризоны под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-Share Alike 3.0 Unported (CC BY-NC-SA 3.0) http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/3.0/

Амниоцентез — NHS

Амниоцентез — это тест, который вам могут предложить во время беременности, чтобы проверить, есть ли у вашего ребенка генетическое или хромосомное заболевание, такое как синдром Дауна, синдром Эдвардса или синдром Патау.

Он включает в себя удаление и тестирование небольшого образца клеток из околоплодных вод, жидкости, которая окружает будущего ребенка в утробе (матке).

Когда предлагается амниоцентез

Амниоцентез предлагается не всем беременным.Он предлагается только в том случае, если у вашего ребенка больше шансов иметь генетическое заболевание.

Это могло быть потому, что:

Важно помнить, что вам не обязательно проходить амниоцентез, если он предлагается. Вам решать, хотите ли вы этого.

Акушерка или врач расскажут вам о том, что включает в себя тест, и расскажут, каковы возможные преимущества и риски, чтобы помочь вам принять решение.

Узнайте, почему предлагается амниоцентез и решаете, проводить ли его

Как проводится амниоцентез

Амниоцентез обычно проводится между 15 и 20 неделями беременности, но при необходимости его можно сделать и позже.

Его можно провести раньше, но это может увеличить риск осложнений амниоцентеза, и его обычно избегают.

Во время теста длинная тонкая игла вводится в брюшную стенку, ориентируясь на ультразвуковое изображение.

Игла вводится в амниотический мешок, окружающий плод, и небольшой образец околоплодных вод удаляется для анализа.

Само обследование обычно занимает около 10 минут, хотя вся консультация может занять около 30 минут.

Амниоцентез обычно описывается как скорее неудобный, чем болезненный.

Некоторые женщины описывают, что испытывают боль, похожую на боль при менструации, или ощущение давления при извлечении иглы.

Узнайте больше о том, что происходит во время амниоцентеза

Получение результатов

Первые результаты теста должны быть доступны в течение 3 рабочих дней и сообщат вам, был ли обнаружен синдром Дауна, синдром Эдвардса или синдром Патау.

Если также проверяются более редкие условия, результаты могут вернуться в течение 3 недель или более.

Если ваш тест покажет, что у вашего ребенка генетическое или хромосомное заболевание, последствия будут подробно обсуждены с вами.

Нет лекарства от большинства состояний, которые обнаруживает амниоцентез, поэтому вам нужно тщательно обдумать возможные варианты.

Вы можете продолжить беременность, собирая информацию о заболевании, чтобы быть полностью готовыми.

Узнайте больше о рождении ребенка, который может родиться с генетическим заболеванием

Или вы можете рассмотреть возможность прерывания беременности (прерывания беременности).

Узнать больше о результатах амниоцентеза

Каковы риски амниоцентеза?

Прежде чем вы решите пройти амниоцентез, с вами обсудят риски и возможные осложнения.

Одним из основных рисков, связанных с амниоцентезом, является выкидыш, то есть потеря беременности в первые 23 недели.

По оценкам, это происходит у 1 из каждых 100 женщин, перенесших амниоцентез.

Существуют также некоторые другие риски, такие как инфекция или необходимость повторной процедуры, поскольку не было возможности точно протестировать первый образец.

Риск осложнений амниоцентеза выше, если он проводится до 15-й недели беременности, поэтому тест проводится только после этого момента.

Узнайте больше о возможных осложнениях амниоцентеза

Какие есть альтернативы?

Альтернативой амниоцентезу является тест, называемый забором ворсин хориона (CVS).

Здесь берут для анализа небольшой образец клеток плаценты, органа, который связывает кровоснабжение матери и ее будущего ребенка.

Обычно его проводят между 11-й и 14-й неделями беременности, хотя при необходимости его можно провести и позже.

При CVS риск выкидыша аналогичен риску выкидыша при амниоцентезе (до 1 из 100).

Так как тест можно провести раньше, у вас будет больше времени для рассмотрения результатов.

Если вам предложат тесты для выявления генетического или хромосомного заболевания у вашего ребенка, специалист, участвующий в проведении теста, сможет обсудить с вами различные варианты и помочь вам принять решение.

Последняя проверка страницы: 17 апреля 2019 г.
Срок следующей проверки: 17 апреля 2022 г.

Стволовые клетки из амниотической жидкости в зачатках химерных почек дифференцируются в функциональные подоциты после трансплантации в почки зрелой крысы

Новаторская работа Grobstein, Saxen и Sariola привела к разработке систем культивирования, которые могут поддерживать рост и дифференциацию зачатков почек мыши in vitro . 1 Культивированные зачатки почек можно легко манипулировать либо генетически, либо путем применения факторов роста, ингибиторов или других небольших биологических веществ, и, таким образом, они являются полезными модельными системами для исследования механизмов, регулирующих развитие почек млекопитающих. Также оценивалась способность зачатков почек интегрироваться в зрелые почки и лечить почечную недостаточность. Woolf et al. 2 показали, что зачатки, трансплантированные в почки новорожденных мышей, генерируют функциональные нефроны с фильтрующей способностью, а последующее исследование, проведенное Роджерсом и Хаммерманом 3 , показало, что трансплантированные зачатки могут улучшить выживаемость анефрических крыс, хотя и в течение всего лишь нескольких дней.Однако, несмотря на эти многообещающие результаты, другое исследование, проведенное Эштоном и соавторами 4 , показало, что, хотя зачатки почек продолжали развиваться в течение нескольких недель после трансплантации, к 3 месяцам их уровень зрелости достигал лишь уровня почек раннего новорожденного. Это означало, что СКФ пересаженных зачатков была эквивалентна только 2% СКФ почки взрослой крысы, что объясняет, почему зачатки не могли поддерживать жизнь у безфричных грызунов дольше нескольких дней.

Хотя эти исследования показывают, что зачатки почек вряд ли будут иметь большую терапевтическую ценность при трансплантации в больные почки, они, тем не менее, могут быть очень эффективными инструментами для оценки нефрогенного потенциала различных типов стволовых клеток и клеток-предшественников.Например, после работы Атала и его сотрудников, 5 , которые обнаружили, что дезагрегированные метанефрои, выделенные из эмбрионов крупного рогатого скота, могут самоорганизовываться с образованием функционирующих нефронов, Унбекандт и Дэвис 6 разработали анализ, который включал разделение зачатков почек мыши на одиночные клетки, объединяя их с экзогенными стволовыми клетками / клетками-предшественниками, а затем позволяя клеткам реагировать с образованием химерных зачатков почек. Эти химерные зачатки могут быть культивированы in vitro , представляя отличные тест-системы для оценки способности экзогенных стволовых клеток генерировать специализированные почечные клетки. 6 Используя этот анализ, было показано, что определенные типы стволовых клеток, в первую очередь плюрипотентные стволовые клетки 7 и стволовые клетки околоплодных вод, 8 , способны интегрироваться в развивающиеся почечные структуры и генерировать специализированные почечные клетки, тогда как другие типы клеток, такие как мезенхимальные стволовые / стромальные клетки, неспособны делать это, 9 , если они не были сконструированы для сверхэкспрессии нейротрофического фактора, происходящего от линии глиальных клеток (GDNF). 10

Таким образом, анализ зачатка химерной почки позволяет исследователям идентифицировать типы стволовых клеток с нефрогенным потенциалом, которые могут быть использованы для применения в регенеративной медицине, открытии лекарств и моделировании заболеваний.Однако, хотя анализ химерного зачатка очень полезен для исследования того, могут ли различные типы стволовых клеток участвовать в развитии нефронов, и может быть использован с большим эффектом для проверки функциональности клеток проксимальных канальцев, полученных из стволовых клеток, 7 является основным недостатком in vitro система зачатков почек заключается в том, что эндотелиальные клетки не инвестируют в развивающиеся клубочки и, следовательно, отсутствуют капиллярные петли, что приводит к нарушению созревания подоцитов.Более того, отсутствие сосудистой сети означает, что подоциты неспособны выполнять селективную фильтрацию, как это было бы in vivo , и, следовательно, функциональность подоцитов, полученных из стволовых клеток, не может быть протестирована. Однако исследование Xinaris et al. 11 показал, что если реагрегированные рудименты, также называемые органоидами почек, трансплантировать в почки взрослых крыс, они могут образовывать васкуляризированные клубочки с капиллярными петлями и щелевыми диафрагмами, которые, по-видимому, обладают некоторой фильтрационной способностью.

В этом выпуске журнала Американского общества нефрологов , Xinaris et al. 12 расширили эти исследования, чтобы ( 1 ) изучить, могут ли реагрегированные зачатки мыши выполнять ультрафильтрацию, ( 2 ) оценить нефрогенный потенциал стволовых клеток околоплодных вод человека (hAFSCs) в химерных зачатках, состоящих из реагрегированных метанефроидов мыши, и ( 3 ) определить, могут ли hAFSC внутри химер генерировать зрелые функциональные подоциты после трансплантации в зрелые почки крысы.Используя электронную микроскопию, Xinaris et al. 12 впервые показывают, что после трансплантации в почки бестимусных взрослых крыс без нефрэктомии реагрегированные зачатки почек мыши могут образовывать васкуляризированные клубочки, некоторые из которых содержат зрелые подоциты с хорошо развитыми отростками стопы и щелевыми диафрагмами. Затем функциональность клубочков исследовали с использованием флуоресцентно меченных декстранов с низкой (10 и 70 кДа) и высокой (155 кДа) молекулярной массой. Было обнаружено, что некоторые из нефронов, образовавшихся внутри химерных рудиментов, способны выполнять ультрафильтрацию, о чем свидетельствует их способность фильтровать низкомолекулярные декстраны, но исключать высокомолекулярный декстран.Xinaris et al. 12 затем оценили нефрогенный потенциал hAFSC. В отличие от предыдущего исследования, 8 Xinaris et al. 12 показали, что hAFSC в химерных зачатках, культивируемых in vitro , обладают ограниченной способностью интегрироваться в развивающиеся почечные структуры, но при генетической модификации аденовирусным вектором, кодирующим GDNF, они могут включаться в конденсированную метанефрическую мезенхиму. Когда химерные зачатки, содержащие GDNF-экспрессирующие hAFSC, культивировали в течение 1 дня in vitro , а затем трансплантировали в зрелые почки крысы, иммунофлуоресцентный анализ показал, что hAFSC могут легко образовывать подоциты.Способность hAFSC образовывать зрелые подоциты была подтверждена с помощью иммуноэлектронной микроскопии, которая показала, что подоциты, полученные из hAFSC, имеют хорошо развитые отростки стопы и щелевые диафрагмы. Наконец, чтобы продемонстрировать функциональность, было проведено двойное окрашивание иммунным золотом на специфический для человека антиген и BSA, чтобы показать, что подоциты, полученные из hAFSC, способны эндоцитозировать альбумин. Интересный вывод исследования Xinaris et al. 12 заключается в том, что hAFSC имеют выраженную склонность к образованию подоцитов и редко образуют клетки проксимальных канальцев.Причины этого не совсем ясны, но Xinaris et al. 12 получили тот же результат, используя две разные линии hAFSC, что указывает на то, что тенденция hAFSC к формированию подоцитов не является особенностью какой-либо одной конкретной линии hAFSC.

Важный аспект исследования Xinaris et al. 12 состоит в том, что он показывает, как трансплантированные химерные зачатки потенциально могут быть использованы для моделирования заболеваний, поражающих подоциты человека. Например, использование hAFSC с мутациями в генах, которые влияют на дифференцировку, рост, выживаемость и / или функцию подоцитов, позволило бы детально изучить процессы инициации и прогрессирования заболевания и оценить возможные методы лечения.Кроме того, используя полученные от пациента плюрипотентные стволовые клетки вместо hAFSCs, можно было бы исследовать более широкий спектр заболеваний почек человека, поскольку, в отличие от hAFSC, индуцированные плюрипотентные стволовые клетки, культивируемые в соответствующих условиях, могут генерировать полный набор типов клеток, из которых состоит нефрон. 13

Можно ли использовать органоиды химерных почек для лечения почечной недостаточности? В настоящее время это кажется маловероятным, потому что в дополнение к вышеупомянутым проблемам с низкой СКФ, которые были зарегистрированы после трансплантации интактных зачатков, 4 в повторно агрегированных химерных зачатках, существует дополнительная проблема, связанная с тем, что дерево зачатков мочеточника не является непрерывным. , что делает невозможным перенос мочи из кортикомедуллярной области в почечную лоханку.

В заключение Xinaris et al. 12 сообщают, что если hAFSC сконструированы для экспрессии GDNF, а затем объединены с дезагрегированными зачатками почек мыши с образованием химерных органоидов почек, hAFSC могут дифференцироваться с образованием функциональных подоцитов после трансплантации в почки взрослых крыс.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *